內切酶 SgrAI

產品組成

產品簡介

SgrAl 來源于灰色鏈霉菌(Streptomyces griseus)，經大腸桿菌重組表達后純化獲得，特異性識別并切割CR/CCGGYG 序列。SgrAl 屬于非快切系列限制酶，但可兼容LabFD 緩沖液,可用于和其他 LabFD 系列限制酶進行雙酶切。基于酶的特殊性SgrAI 需要兩個及以上的酶切位點才能實現高效切割，對單位點的底物切割效率顯著下降。

建議反應條件：1×Cut buffer B；37℃溫育；參照“DNA 快速酶切流程"配制反應體系。

失活條件：80℃溫育 20 min。

活性定義：1 活性單位 (U) 是指在 50 μl 反應體系中，37℃ 1 h內wan全酶切 1 µg λDNA 所需的酶量。

質量控制

功能活性檢測

37℃下，在 20ul 反應體系中，10U SgrAI 能夠在 15min 內wan全消化1ug λDNA。

超長時間溫育檢測

37℃下，將 10U SgrAI 與1ug λDNA 共同溫育 3h，未檢測到其他核酸酶污染或星號活性引起的底物非特異性降解，延時酶切可能出現星號活性。

酶切-連接-再酶切檢測

37℃下，使用 10 U SgrAI 消化 DNA 底物，回收酶切產物，在 22℃下使用 T4 DNA Ligase (Fast) 可以將酶切產物重新連接。將連接產物再次回收后，使用相同的內切酶可以重新切開連接產物。

使用方法

1.DNA 快速酶切流程

（1）在冰上按如下建議的加樣順序配制反應體系：

a. DNA 底物中應不含ben酚、氯仿、乙醇、EDTA、洗滌劑或高濃度鹽，否則將會影響SgrAI酶活性。

（2）輕柔吸打或輕彈管壁以混勻（切勿渦旋），然后瞬時離心以收集掛壁液滴；

（3）37℃溫育 15min~60min；

（4）80℃溫育 20 min 即可使酶失活，或者通過吸附柱或ben fen/氯仿純化終止反應。

2. 注意事項

①酶切需要兩個或兩個以上識別位點。

②每 μg DNA 底物使用的酶量不建議超過 10 U。

③因為反應中酶的穩定性，即使溫育時間超過1h也不會提高酶切效率，除非增加酶量。

④延長酶切時間、高濃度酶或>5% 的甘油濃度可能產生星號活性,尤其不建議過夜酶切。

不同 DNA 中的酶切位點數量

甲基化修飾影響

在不同反應緩沖液中的活性

注：活性數據來自 LABLEAD 限制酶標準反應體系下的檢測。