T4 DNA Ligase(Fast)

產品貨號：T5205-200U

儲存條件：-20℃

產品組成

注：1U=1 Weiss unit

產品簡介

T4 DNA Ligase(Fast)由攜帶T4噬菌體gene30的大腸桿菌產生。該酶催化雙螺旋DNA或RNA之間的5'-磷酸基團和3'-羥基之間形成磷酸二酯鍵。該酶在雙鏈DNA、RNA或者DNA/RNA復合物間可修復單鏈缺刻，并且可以連接有粘性末端或者平末端的DNA片段，但對于單鏈核酸無活性，主要用于限制性內切酶酶切產物DNA片段克隆、基因定點突變與PCR產物克隆、修復雙鏈DNA缺刻與線性DNA自環化。T4 DNA Ligase(Fast)需要ATP作為輔助因子，在室溫下完成粘性末端連接反應僅需10分鐘。

酶活單位定義

37℃條件下，1 Weiss unit的酶在20min內催化1nmol的[PPi]轉變為活性炭吸附態。1 Weiss unit等同于約200個粘性末端連接反應單位（CEU），相當于在16℃條件下，30min內連接50% HindIII消化后的λDNA片段。

酶活檢測條件

酶活在如下反應混合物中進行測試：66mM Tris-HCl(pH7.6)，6.6mM MgCl，0.066mM ATP，10mM DTT，3.3μM[32PPi]。

質量控制

核酸量內控切酶制殘留測試

37℃條件下，將200U的T4 DNA Ligase(Fast)與1ug的pUC19DNA中溫育4h，未檢測出共價閉合環狀DNA轉變為帶有缺刻的DNA。

核酸外切酶殘留檢測

將酶液與雙鏈DNA底物在37℃溫育16h，通過DNA電泳檢測雙鏈DNA底物無變化。

藍白斑測試

室溫條件下，使用30U T4 DNA Ligase連接pUC57 DNA/HindIII，pUC57 DNA/PstI或pUC57 DNA/SmaI消化產物1h，然后用E.coli XL1-Blue感受態細胞轉化連接產物，檢測到少于1%的白斑。

使用方法

1.DNA插入片段連接至載體DNA（粘性末端連接）

1）于冰上配制如下反應體系：

2）充分混勻并瞬離，22℃溫育10min；

3）取1~5ul的連接產物用于50ul化學感受態細胞的轉化，或者取1~2ul用于50ul電轉感受態細胞的轉化。

注：如果連接反應產物用于電轉化，應使用離心柱或者氯仿抽提清潔DNA代替熱失活步驟。

2.DNA插入片段連接至載體DNA（平末端連接）

1）于冰上配制如下反應體系：

2）充分混勻并瞬離，22℃溫育1h；

3）取1~5ul的連接產物用于50ul化學感受態細胞的轉化，或者取1~2ul用于50ul電轉感受態細胞的轉化。

注：如果連接反應產物用于電轉化，應使用離心柱或者氯仿抽提清潔DNA代替熱失活步驟。

1. 線性DNA自環化

1）于冰上配制如下反應體系：

2）徹di混勻并瞬離，22℃溫育10min；

3）取1~5ul的連接產物用于50ul化學感受態細胞的轉化，或者取1~2ul用于50ul電轉感受態細胞的轉化。

注：如果連接反應產物用于電轉化，應使用離心柱或者氯仿抽提清潔DNA代替熱失活步驟。

2.接頭連接

雙鏈寡核苷酸接頭經常被用于在插入片段上產生粘性末端。接頭通常包含限制酶識別位點，在連接后經酶切處理產生和克隆載體匹配的粘端。有時候接頭已包含與克隆載體匹配的粘端，此時無需在接頭連接完成后進行插入片段的進一步處理。

1）于冰上配制如下反應體系：

2）徹di混勻并瞬離，22℃溫育10min；

3）在65℃作用10min或者70℃作用5min，進行熱失活。

注：添加1mM ATP的條件下，T4 DNA Ligase(Fast)在LabFD™酶切緩沖液中具有100%活性。因此，接頭連接反應時可以在LabFD™酶切緩沖液中進行，以簡化“接頭連接-酶切"實驗流程。具體方法為：接頭連接反應完成后，先失活T4 DNA Ligase，然后向該體系中添加ATP至終濃度1mM，再在體系中加入適量的LabFD™快速內切酶，最后使用最適酶切反應溫度進行溫育即可。

注意事項

1）T4 DNA Ligase在濃度高于200mM的NaCl或KCl中會被強烈抑制；

2）連接反應液添加量不應該超過感受態細胞體積的10%，不推薦體系中加入過量的T4 DNA Ligase；

3）與T4 DNA Ligase結合的DNA可能會在瓊脂糖凝膠中出現帶移或彌散，為了避免此現象，可以在上樣前對酶進行熱失活，必要時加入適量的SDS；

4）聚乙二醇（PEG）能極大地提高平末端連接的連接效率，PEG8000的推薦添加量是連接體系的5%（w/v）；

5）電轉化效率可能通過對T4 DNA Ligase熱失活或者使用離心柱或者氯仿抽提純化DNA方式來提高；

6）轉化子數目可通過延長反應時間至1h而增加。